GoldStar Best DNA Polymerase說明書
(5×GoldStar Best PCR Buffer With Mg )2+
目錄號：K0654
保存條件：-20℃保存。
組分說明
Cat. No. K0654 K0654A K0654C
Kit Size 250 U 500 U 6×500 U
GoldStar Best DNA Polymerase, 5 U/μl 50 μl 100 μl 6×100 μl
5×GoldStar Best PCR Buffer 1 ml 2×1 ml 3×5 ml
注意：本產品的5×GoldStar Best PCR Buffer中含有7.5mM鎂離子。
產品簡介
該產品是經過特殊處理的熱啟動高保真聚合酶。該聚合酶具有 5′-3′DNA聚合酶活
性，5′-3′核酸外切酶活性和3′-5′核酸外切酶活性，在普通PCR條件下，與GoldStar Taq
DNA Polymerase相比，具有擴增效率高、錯配率低的優良性能。化學修飾使該酶在常
溫下沒有聚合酶活性，有效避免在常溫條件下由引物和模板非特異性結合或引物二聚
體而產生的非特異性擴增，酶的激活須在 95℃下孵育10分鐘，該條件可以整合入已有
的PCR熱循環程序。優化的緩沖體系使酶的作用發揮最大功效，實現對目的片段的高
保真、高特異性、高擴增效率、高靈敏度擴增。使用本制品擴增得到的 PCR產物的3′
端附有一個“A"堿基，因此可直接用于T/A克隆。本產品應用于常規的PCR、RT-PCR和
多重PCR，特別適用于對特異性、保真性和擴增效率均有較高要求的PCR。
活性定義
用活性化的大馬哈魚精ziDNA作為模板/引物，在74℃，30分鐘內，將10 nmol脫
氧核苷酸摻入到酸性不溶物質所需的酶量定義為1個活性單位（U）。
質量控制
經過多次柱純化， SDS-PAGE檢測其純度大于99%；經檢測無外源核酸酶活性；
PCR方法檢測無宿主殘余DNA；能有效地擴增人基因組中的單拷貝基因；室溫存放一
個月，無明顯活性改變。
本產品僅供科研使用，請勿用于臨床診斷及其他用途
使用方法
以下舉例為常規PCR反應體系和反應條件，實際操作中應根據模板、引物結構和目的
片段大小不同進行相應的改進和優化。
1. PCR反應體系
試劑 50 μl反應體系 終濃度
5×GoldStar Best Taq PCR Buffer 10 μl 1×
dNTP Mix，2.5 mM each 4 μl 200 μM each
Forward Primer，10 μM 2 μl 0.4 μM
Reverse Primer，10 μM 2 μl 0.4 μM
Template DNA <1 μg <1 μg/reaction
GoldStar Best Taq DNA Polymerase，5 U/μl 0.5 μl
RNase-Free Water up to 50 μl
注意：1）引物濃度請以終濃度0.1-1.0 μM作為設定范圍的參考。擴增效率不高的情況下，可提高引物的濃度；發生非特異性反應時，可降低引物濃度，由此優化反應體系。
2）鎂離子濃度請以終濃度1.5-3 mM作為設定范圍的參考。本產品的5×GoldStar Best Taq PCR Buffer中已含有7.5 mM鎂離子，可根據不同引物對和模板調節鎂離子濃度，由此優化反應體系。
2. PCR反應條件
步驟 溫度 時間
預變性 95℃ 10 min
變性 94℃ 30 s
退火 55-65℃ 30 s 30-40個循環
延伸 72℃ 60 s
終延伸 72℃ 5 min
注意：1）一般實驗中退火溫度比擴增引物的熔解溫度Tm低5℃，無法得到理想的擴增效率時，適當降低退火溫度；發生非特異性反應時，提高退火溫度，由此優化反應條件。
2）延伸時間應根據所擴增片段大小設定，本產品中所包含的GoldStar Best DNA Polymerase的擴增效率為1 kb/min。
3）可根據擴增產物的下游應用設定循環數。如果循環次數太少，擴增量不足；如果循環次數太多，錯配機率會增加，非特異性背景嚴重。所以在保證產物得率的前提下應盡量減少循環次數。
4）本產品須在預變性95℃，10 min條件下實現酶的活化。
3.結果檢測：反應結束后取5 µl反應產物，加入適量上樣緩沖液后進行瓊脂糖凝膠電泳檢測。
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